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Reproducción (22)

Factores que influyen en la congelación del semen de toros (Tercera parte)

1. Aquellos que están relacionados a la protección de la membrana durante el proceso de congelación-descongelación 

1.a: Se admite que el daño que los espermatozoides sufren durante el proceso de congelación descongelación es superior a el ocasionado por la dilución o el agregado de glicerol. El mismo es ocasionado por efecto temperatura y osmótico y afecta la morfología y fisiología de los espermatozoides incluyendo la regulación del calcio intracelular, la uidez de la membrana plasmática, la permeabilidad, la composición lipídica y la actividad mitocondrial (Watson); así como la induce la perdida de proteínas plasmáticas de membrana necesarias durante la fecundación en el tracto genital de la vaca (Lessar y col). 


Los daños ocasionados por este proceso pueden ser reducidos usando crioprotectores como el glicerol, la yema de huevo y azucares en los diluyentes. Una nueva generación de diluyentes de semen bovino (Biociphos plusTM, BioxcellTM, AndromedTM) hizo aparición a mitades de los años 90, se trata de diluyentes sintéticos sin productos de origen animal. La característica principal de los mismos es la de emplear un substituto de la yema de huevo. El objetivo principal de este tipo de producto no ha sido el de mejorar la respuesta a la congelación, sino el de evitar la contaminación bacteriológica del diluyente por intermedio de la yema de huevo (que puede llegar a proporciones de mas de 106 UFC/ ml, Decuadro-Hansen); así como el de facilitar la fabricación cotidiana del diluyente en CIA y la de mejorar la lectura al microscopio del semen congelado (nitidez de la lectura). Numerosos test de campo han permitido con rmar las excelentes TNR obtenidas con este tipo de diluyente versus los diluyentes a base de yema de huevo inclusive en baja concentración de espermatozoides congelados por dosis (ver tabla 3). 

Tabla 3: TNR después de inseminación artificial con semen congelado obtenida con dosis de 15 y 5 millones de espermatozoides totales diluidos en diluyentes a base de Tris-yema de huevo (Triladyl) y diluentes sin yema de huevos : Bioxcell y Andromed. El test de campo incluye 5000 IAP por diluyente (Nehring H et Rothe L). 

 

 

 

 

 

No obstante, persistirán algunos parámetros o interacciones que pueden favorecer un diluyente en relación a otro ya sea con o sin yema de huevo, como por ejemplo, la «velocidad del enfriado del semen» de +32-34°C a +2-4°C, el número de espermatozoides totales o con motilidad progresiva utilizados que pueden «esconder» las diferencias o la «preferencia» que un semen puede tener con un diluyente en relación a otro. 

Así por ejemplo si comparamos 2 diluyentes entre sí en condiciones de campo, sería interesante disminuir la concentración de espermatozoides por dosis, a los efectos de detectar diferencias significativas entre diluyentes en materia de TNR. 

Es altamente probable que el semen de algunos toros «prefieran» un diluyente en particular con respecto a otro. Cuando se comparan 2 o más diluyentes, a los efectos de disminuir los factores que in uencian la fertilidad, debería utilizarse sistemáticamente la técnica del «eyaculado fraccionado» en uno o mejor varios CIA. Esto permite comparar diluyentes reduciendo los factores que eventualmente pueden in uenciar la prueba, como ser: el CIA, el tratamiento del semen (protocolo de dilución, enfriamiento y envasado), el factor toro y el factor eyaculado. 

1.b: El LDL (lipoproteínas de baja densidad de la yema de huevo) y el colesterol: Numerosos autores han mencionado que la fracción de lipoproteínas de baja densidad de la yema de huevo conocida como LDL interacciona con la membrana de los espermatozoides durante el proceso de congelación descongelación y es la responsable de la protección durante la dilución y la crioconservación. Un nuevo método de extracción del LDL fue desarrollado en el INRA de Rennes (France) y experimentado en semen bovino con excelentes resultados. El LDL así extraído ha sido empleado como fuente de lipoproteínas en diluyentes a base de Tris, acido cítrico y fructosa comerciales y ha permitido con rmar el rol crioprotector de esta molécula así como la concentración optima en los diluyentes de semen bovino: 8 % w/v (Antón, INRA de Rennes comunicación personal). Los resultados obtenidos por el equipo de Briandt-Amarat y col., han permitido con rmar el efecto bené co de esta nueva metodología de extracción del LDL ya que más espermatozoides motiles (54.4%) a la descongelación fueron hallados con el uso de un diluyente a base de Tris, acido cítrico fructosa + 8 w/v de LDL que con el mismo diluyente adicionado de 20% de yema de huevo (30,2%). En otro orden de cosas, Graham. y col., reporta una mejor viabilidad del semen bovino cuando el mismo es tratado previamente con colesterol y ciclodextrinas, sin embargo no existen hasta el día de hoy ningún test de campo que confirme que este tratamiento previo la congelación permita mejorar los resultados de fertilidad de los toros problema. 

2. Aquellos que incorporan substancias a carácter antioxidante (AOX) en el diluyente. 

La dinámica de la membrana plasmática de la célula espermática cumple un papel importante en los procesos de maduración, capacitación y fecundación (Wolfe et al., Müller et al.), sin embargo, el aumento de los radicales libres (ROS) pueden dañarla (Clarkson y Thompson.), y una de las principales causas del deterioro espermático es el estrés oxidante que causa peroxidación de los lípidos de la membrana plasmática, modi ca su uidez y altera la permeabilidad, lo que puede conducir a la célula a un proceso de muerte celular (Batellier et al.). 

La membrana de los espermatozoides contienen una alta concentración de ácidos grasos polinsaturados lo que le transmite a la misma una alta susceptibilidad a los problemas de daño oxidativo (oxidación o peroxidación) lo cual puede interferir en el proceso de fecundación. Este fenómeno fue recientemente confirmado en el trabajo de Kasimanickam R y col. 

Con base en lo anterior se puede considerar que un área prometedora de estudio es el posible pretratamiento contra los procesos de peroxidación de los espermatozoides o en el medio de dilución para proteger o conservar la integridad de su membrana durante el proceso de congelación y descongelación (Leboeuf et al.), ya que se sabe que los metabolitos generados por las ROS durante los procesos oxidantes trastornan la fusión espermatozoide-ovocito, la movilidad espermática y la integridad del ADN (Aitken et al.). 

La acumulación de ROS ha sido también comprobada durante la conservación de semen fresco de toro así como después de la descongelación del semen. 

Este «stress oxidativo» se ha asociado en el esperma humano con baja fertilidad y alteración del desarrollo embrionario (Aitken et al; Griveau and LeLannou., De Iuliis et al.). 

Sustancias antioxidantes están normalmente presentes en los espermatozoides y en el plasma seminal. Algunos de ellos son moléculas no enzimáticos como el a-tocopherol, acido ascórbico, glutathione (Halliwell and Gutteridge); piruvato (de Lamirande and Gagnon); taurina, hypotaurina y albúmina (Alvarez and Storey). 

Se han llevado a cabo varios experimentos usando substancias AOX en diferentes especies animales para mejorar la calidad del semen y la fertilidad del mismo. Hasta ahora pocos resultados son realmente concluyentes. Bilodeau y col., trabajando con un diluyente a base de Tris-yema de huevo glicerol encontró que el agregado de uido de oviducto rico en catalasa y piruvato mantenía la motilidad y viabilidad del semen así como los niveles de ATP intracelular cuando el semen era desafiado con H202. Foote y col., usaron glutation reducido (GSH), superoxyde dismutase (SOD), acido ascórbico, hypotaurina, Tempo y Tempol en un diluyente a base de leche. Entre los AOX usados solo el GSH consiguió mejorar los parámetros in vitro del semen liquido y descongelado sin aumento signi cativo de la fertilidad a campo. 

Bing rond y col; hallan que el agregado de glicina y betaina (100 o 200 mM) a diluyentes tipo Talp-yema de huevo o Tres-Test-yema de huevo mejora en forma signi cativa la motilidad del semen fresco a 20, 5 y 0 C en toros de baja y buena congelabilidad. 

Identificación de la eficacia de la acción antioxidante en el semen: 

Para desafiar el semen con ROS Gérard y col agregaron al semen bovino diluido cantidades crecientes de peroxido de hidrogeno (de 0 a 1 mM) y ensayaron 36 moléculas con actividad antioxidante en concentraciones de 50 micro M hasta 5 m para medir el rol protector de algunas. Solo 4 (designadas como N, AC, AE y AF) de las 36 moléculas testeadas permitieron mantener la motilidad y el vigor del semen (ver tabla 4 caso del AC). 

Efecto de los AXO sobre las características in vitro de los espermatozoides cuando los mismos son agregados a los diluyentes comerciales. Semen fresco o líquido (Gérard O). 

11 centros de producción de semen de Francia participaron en el siguiente test 

a) Semen fresco: El semen de 7 toros colectados 2 veces por semana durante 3 semanas fue tratado por la técnica del «split ejaculate» en 3 fracciones y diluidas con un diluyente comercial a base de Trisyema de huevo (control, A01 Tris-yema enriquecido con AOX N a 1 mM y A05 Tris-yema enriquecido con AOX N a 5 mM, ver tabla 5). La adición de dicho AOX tuvo un claro efecto positivo (motilidad y vigor) a la concentración de 1 mM desde el día 2 y hasta el día 4. 

Efecto de los AXO sobre las características in vitro de los espermatozoides cuando los mismos son agregados a los diluyentes comerciales. Semen congelado. 

El semen de 10 toros colectados 2 veces por semana durante 3 semanas fue tratado por la técnica del «splitejaculate» y diluido con un diluyente comercial a base de Tris-yema de huevo o un diluyente sintético sin productos de origen animal enriquecido o no con 4 diferentes AOX y 2 concentraciones diferentes. El semen congelado así producido fue evaluado por microscopia de contraste de fases y sistema CASA (Ivos HT) para los parámetros de motilidad y vigor, así como por citometria de ujo para los parámetros de viabilidad. Solo los AOX N y AC a una concentración de 5 mM mostraron una respuesta positiva. Los resultados de 4 de los CIA que participaron en este test se encuentran en la tabla 6. Cuando fueron usados 5 mM la viabilidad del semen no fue signi cativa diferente pero los parámetros de velocidad si. 

Teniendo en cuenta estos resultados promisorios se realizo un test de campo con semen fresco y con semen congelado. 

Semen fresco: 

3 toros Holstein fueron colectados y su semen fraccionado en dos por la técnica del split ejaculate y diluido en Tris-yema de huevo, Tris-yema de huevo + AOX, las dosis fueron concentradas con 5 millones de espermatozoides totales cada una. Paralelamente semen de los mismos toros pero de otros eyaculados fue colectado diluido con Tris-yema de huevo y congelado. 

La adición de AOX a el diluyente aumento de forma significativa la TNR del toro 1 y 2 (+ 13% y + 6 % respectivamente, tabla 7 y 8) mientras que fue levemente deprimida en el toro 3 (-3%). A señalar que para todos los toros la TNR fue superior en semen fresco enriquecido en N que en semen congelado. 

 

Semen congelado (Gérard O). 

Varios test fueron realizados para con rmar el efecto bené co del uso de AOX AC en el diluyente usado para congelar semen bovino y no es el objetivo de este trabajo de describirlos en detalle. En regla general, si bien se observa un efecto toro, el agregado del AOX AC permitió mejorar la fertilidad medida por la TNR 90 días en 3 puntos (tabla 9). 

3.2 Efecto tratamiento del semen: curva de enfriado 

Una vez el eyaculado colectado pocas son los métodos que permiten mejorar la calidad del semen a la descongelación. 

El semen de toro se colecta en general sobre tubo seco y estéril sin diluyente. Un estudio reciente (Wendee)., narra las bondades de realizar la colecta sobre un dispositivo llamado BreedMaXTM el cual contiene diluyente en su interior que se debe entibiar a 37 C antes de realizar la colecta. No obstante el semen de toro puede permanecer sin diluyente alguno en un baño maría durante un periodo de 30 minutos. En efecto, a la n de los años 60 algunos CIA practicaban este método llamado «holding» (mantenimiento del semen puro 10-30 minutos en baño maría antes de la dilución). Es en parte lo que se sigue realizando cuando dos colectas se hacen sucesivamente a 20 minutos de intervalo, sin embargo es opinión del autor que en eyaculados altamente concentrados (> 2 billones de espermatozoides/ ml) es interesante realizar una pre dilución. 

Gran parte de los cuidados y tiempos respetados usados en el laboratorio del CIA son destinados a evitar el cold schock. 

En regla general, después de colectado, el semen debe enfriarse a 4-5 C en forma gradual (1.5- 2 h mínimo) y luego equilibrarse (tiempo de espera a 4-5 C hasta la congelación) durante 3-24 h. Es opinión del autor que poco se ha experimentado con la primera fase de la curva (37 C hasta 4-5 C). Así por ejemplo, diluyendo y llenando las paillettes a temperatura ambiente, el autor obtuvo buenos resultados de motilidad y viabilidad con semen calificado mediocre a el examen post colecta bajando la temperatura desde 20 C hasta 4 C en 160 minutos a 0.1 C/minuto en un congelador programable (Minidigtcoll IMV- Technologies). Es posible que este tipo de descenso de la temperatura sea mas regular, homogéneo y lento que el enfriado en masa realizado en recipientes en donde la técnica no esta estandardizada (descenso con recipiente sumergido en agua del baño maría o no, calidad y potencia del refrigerador, etc.). 

Sin embargo, numerosas experiencias han sido realizadas con la equilibración y han mostrado que es más importante el tiempo de incubación del semen diluido a 4-5 C que el tiempo en el cual el semen esta en presencia del glicerol (Salisbury y col). 

Los trabajos de Gilbert y Almquist; así como de Frijters., están a favor de una equilibración prolongada de 9 y 16 h respectivamente debido a una mejor motilidad, porcentaje de acrosomas normales y viabilidad (integridad de la membrana) obtenida frente a periodos de equilibración más cortos. El uso de tiempos de equilibración largos fue experimentado a campo por Foote y Kaproth; quienes compararon en un test a gran escala (14.000 IA) dos tiempos de equilibración del semen bovino diluido en diluyente a base de leche: 4 versus 28 h sin observar diferencias significativas en la fertilidad. En Francia el tiempo promedio de equilibración es hoy en día de 5 horas. 

Pribenszky y col., presentaron una mejora sustancial de los resultados a la descongelación y de la fertilidad del semen bovino después que las paillettes fueron tratadas con presión de 300 bar durante 90 minutos a temperatura ambiente antes de practicar el enfriado a 4-5 C. Esta estrategia puede ser interesante para toros de baja congelabilidad no obstante es necesario que se evalué con un numero de toros importante. 

El tipo de embalaje usado para contener el semen: pajuelas nas, medias, pellets influencia la curva de congelación, sin embargo pocos son los artículos cientí cos que han comparado en eyaculado fraccionado la calidad de cada embalaje frente a la fertilidad a campo. En regla general el autor considera que no existen diferencias signi cativas de fertilidad entre las pajuelas nas y las medias en acuerdo con Kupferschmied. 

Las técnicas de congelación del semen en si han evolucionado en forma importante en estos últimos 10 años. Hoy en día la mayoría de los CIA poseen un congelador programable que permite modular la curva de enfriado en ritmos de 0.1 C/ minuto hasta 60 C/minuto. La curva de descenso de temperatura para el semen bovino puede realizarse a diferentes velocidades (Saacke)., sin embargo en opinión del autor los mejores resultados son obtenidos con una velocidad de descenso de 40-50 C/minuto entre -10 y – 100 C. 

3.3 Efecto número de espermatozoides por dosis de IA 

Uno de los conceptos principales con respecto a la evaluación de la fertilidad de los toros es la relación entre la calidad y cantidad de espermatozoides. Dentro de este concepto propuesto por Salisbury en 1961 (32) se considera que para una característica dada del semen, la fertilidad aumenta en función del incremento de la misma hasta un valor máximo a partir del cual los factores limitantes son otras características del semen o la población de hembras 

Esta «característica» puede ser: 1) un factor cualitativo del eyaculado (motilidad, proteínas del plasma seminal, etc.), 2) el número de espermatozoides inseminados, o 3) o el número de espermatozoides con una característica particular. Pace y col., así como Den Das; demostraron que esta relación con la fertilidad existe realmente para el número de espermatozoides que posean una serie de criterios de viabilidad. Es decir que el número de espermatozoides inseminados (y no el porcentaje) que presentan ciertos parámetros de viabilidad (motilidad progresiva, integridad del acrosoma, aptitud a reaccionar a la prueba de resistencia osmótica, aptitud para atravesar un filtro de Sephadex, etc.) está correlacionado con la fertilidad. Esta relación es de tipo exponencial y tiende a una asíntota (Figura 1). En lo que respecta al número de espermatozoides con motilidad progresiva, Pace y col., informaron que la TNR 90 días disminuyó en 4,9% cuando el número de espermatozoides móviles después de la descongelación pasó de 8 a 2 millones por dosis. 

En otro estudio, Foote y Parks; remarcaron que la fertilidad disminuyó un 1% (p<0,05) cuando el número de espermatozoides totales pasó de 24 a 12 millones. Sin embargo este efecto de la disminución eventual de la fertilidad en función del número de espermatozoides no se observa en todos los toros. 

Por otro lado es importante señalar que los toros catalogados como «poco fértiles» no podrán alcanzar una fertilidad correcta o comercialmente aceptable, a pesar de utilizar dosis de semen altamente concentradas en espermatozoides. 

Januskauskas y col., compararon los resultados de fertilidad obtenidos con 5 toros que fueron utilizados en IA con una concentración de entre 10 y 15 millones de espermatozoides por dosis. Dos toros mantuvieron su fertilidad mientras que los otros tres perdieron 3,4 a 4,7% de TNR 56 días. Es interesante resaltar que el toro con peores resultados de fertilidad era menos fértil aún con 15 millones de espermatozoides. 

En regla general los toros poco fértiles requieren más espermatozoides por dosis para alcanzar su valor máximo de TNR Stalhammar y col.). 

A su vez este tipo de toros no alcanzan a tener una TNR dentro de lo que puede considerarse como aceptable a pesar de aumentar la concentración de espermatozoides en la pajuela. Estas dos nociones: 1) aumento más lento de la fertilidad en función del número de espermatozoides inseminados y 2) un máximo de fertilidad alcanzado menor al resto de los toros del CIA nos hace recordar los principios mencionados al principio como factores compensables y no compensables. Como lo muestra la Figura 1, el toro A es de referencia, el toro B presenta una de ciencia que puede ser compensada aumentando la concentración de espermatozoides en las pajuelas y el toro C presenta factores no compensables que no le permiten alcanzar una TNR aceptable. 

3.4 Efecto número de espermatozoides viables por dosis de IA 

Desde el inicio de la IA en bovinos, los CIA procuraron un método simple, preciso, e caz y relacionado con la fertilidad a campo para evaluar el semen de toro. Los exámenes del semen como el volumen, la motilidad de masa e individual así como la concentración son particularmente e caces para eliminar los eyaculados o pajuelas de mala calidad pero ine caces para determinar la fertilidad de los toros. 

Por ejemplo, la subjetividad e imprecisión del control de motilidad post-descongelado de las paillettes bovinas imposibilita la harmonización de los criterios de aceptación del semen entre CIA. En los últimos años, una serie de pruebas de laboratorio se han desarrollado para evaluar otros parámetros seminales tales como la integridad de la membrana de los spz o del acrosoma, en base al uso de soluciones hiposmóticas o en el uso de colorantes uorescentes y un citómetro de ujo. 

Christensen y col; desarrollaron un método destinado a estudiar la relación entre la viabilidad del semen estimada por citometría de flujo (FACSCountTM BD/SYBR14/PI) y la fertilidad a campo. Decuadro-Hansen y col observaron una correlación positiva entre la TNR y el número de espermatozoides viables por dosis de IA (Figura 2) en una prueba a campo realizado en Francia con 13 toros diferentes y 2154 IAP. 

3.5 Precio de la dosis de semen 

El precio de venta de la dosis de semen es un factor que el CIA debe tener en cuenta cuando analiza la fertilidad de un toro. Así por ejemplo en Canadá, Van Doormaal., encontró que las dosis de menos de 15 dólares canadienses presentaban una «fertilidad» superior a aquellas más caras. En efecto, los productores utilizan estas dosis más caras sobre vacas de alta calidad genética y por ende con una producción lechera mayor, lo cual castiga la fertilidad de las dosis utilizadas. Así un aumento de la producción de leche de +1.000Kg determinó una disminución de 3% enlaTNR28díasyde4%enlaTNR 90 días. 

Elección de un número de espermatozoides / dosis 

Con motivo de simpli car el trabajo, la mayoría de los CIA utilizan un objetivo común para todos los toros, que se expresa en el número de espermatozoides por dosis o número de espermatozoides con motilidad progresiva por dosis. 

La existencia de numerosas fuentes de variación de fertilidad (toro, eyaculado, estación del año, número de espermatozoides, IA, hembra) impone al CIA escoger un número de espermatozoides por dosis bastante elevado, lo cual establece un cierto margen de seguridad. Esto justifica el empleo de cantidades altas de espermatozoides por dosis en los toros de razas lecheras (aproximadamente de 20 millones), lo cual, según el porcentaje de espermatozoides con motilidad progresiva obtenido después de la descongelación (por ejemplo 30 a 50%), permite disponer de entre 6 a 10 millones de espermatozoides con motilidad progresiva por dosis para la gran mayoría de los eyaculados. La TNR 90 días promedio que se puede esperar según la fórmula de Pace y col., sería de 70,4 y 71,4% respectivamente. 

Relación entre la evaluación in vitro y la fertilidad 

Es común en los CIA de limitar el examen de semen descongelado a una simple evaluación de la motilidad inmediata o diferida (test de termoresistencia). Sin embargo, Amann., y Pace y col., demostraron más de una vez que dosis que presentaban un adecuado número de espermatozoides con motilidad progresiva a el descongelado podían ser responsables de un porcentaje bajo de fertilidad. Asimismo, Stalhammar y col., estiman que si bien la motilidad antes y después de la congelación es diferente entre los toros de un CIA, la misma sólo representa 1% de la variabilidad de la TNR. 

El uso de los sistemas CASA permitió darle objetividad a los parámetros de motilidad y estudiar otros no detectables por el ojo humano. Recientemente Hallap y col., encontraron una correlación interesante entre la fertilidad a campo y algunos parámetros CASA: la velocidad promedio medida (VAP) (p < 0.001), la motilidad total (p < 0.01), la linearidad (p < 0.05) y el numero de espermatozoides móviles (p < 0.05), todos medidos después de practicar el swim-up. 

La evaluación de un reproductor al ingreso en un CIA consiste en un examen clínico completo, con especial atención al tracto genital y al aparato locomotor, una serie de exámenes complementarios destinados al control sanitario (serológicos, control de enfermedades venéreas, Schalm test, etc.), y un examen minucioso de las características del eyaculado: volumen, concentración, motilidad, examen de las anomalías morfológicas de los espermatozoides (mínimo 3 sobre los segundos eyaculados), y evaluación de la aptitud a la congelación (motilidad, acrosomas, integridad de la membrana). Luego de esta evaluación del potencial reproductor del toro, los animales son generalmente clasificados en aceptables, inaceptables o regulares. Generalmente los animales clasificados como «aceptables» y «regulares» ingresan dentro del esquema de producción de semen, sabiendo que los segundos sufrirán un examen complementario. Los animales «infértiles» son generalmente eliminados dentro de este esquema, sin embargo debemos tener siempre presente que es «riesgoso» querer clasi car los animales únicamente sobre la base de las apreciaciones in vitro. Como sabemos, existen diferencias importantes entre CIA y laboratorios en lo que se re ere a los criterios de eliminación de los eyaculados y pajuelas de un toro lo cual demuestra la falta de harmonización así como la subjetividad e imprecisión de los criterios generalmente utilizados (motilidad) para calificar un reproductor. Efectivamente como vimos, los factores que in uencian la fertilidad son numerosos e interactúan entre sí. La evaluación in vitro es delicada ya que los coe cientes de correlación entre la misma y la fertilidad in vivo raramente sobrepasan a 0,4. Esto se debe a la poca variabilidad existente entre los toros utilizados en IA (los cuales son seleccionados por este carácter), a la concentración elevada de espermatozoides por dosis y a los numerosos cofactores que in uencian la fertilidad. Como regla general no existe correlación alta entre los test de evaluación in vitro del semen y la fertilidad. 

Sin embargo una correlación importante, próxima a uno (r= 0.99), fue hallada por Christensen y col. entre la viabilidad del semen evaluada por citometría de ujo y la fertilidad. 

Dentro de los parámetros seminales que podrían considerarse como altamente correlacionados con la TNR se encuentran: la motilidad individual de los espermatozoides en el eyaculado fresco inmediatamente después de colectado y la motilidad inmediata al descongelado (Christensen y col). 

El criterio de fertilidad que debemos privilegiar es la tasa de parición o en su defecto una TNR tardía. 

Problemas prácticos en la evaluación de la fertilidad 

Si suponemos que todos los aspectos ligados a la hembra y a la IA son correctamente controlados, la fertilidad de los toros de IA no caracteriza el poder fecundante del reproductor sino el poder fecundante de la dosis de semen utilizada. Sin embargo muchos factores pueden confundirnos en la apreciación de la fertilidad de un toro, sobre todo si consideramos los elementos sobre los que vamos a calcular el poder fecundante (Tabla 10). 

Por ejemplo, si se quiere estimar el poder fecundante a partir de las pajuelas utilizadas, la fertilidad del macho observada permite obtener una buena estimación poco in uenciada por el factor inseminador y por la hembra, en la medida que el semen sea de buena calidad y el número de IA importante. 

Conclusión 

Cuando se analiza la fertilidad de un toro a nivel de campo se pone en evidencia un conjunto de factores ajenos al toro mismo. 

Sin embargo para un CIA con un número importante de toros en producción y practicando el mismo manejo de los eyaculados (dilución, enfriamiento, equilibramiento y congelación), es posible identi car que el factor «toro» pesa de forma preponderante en el resultado nal obtenido (TNR). 

La observación de este efecto macho, autoriza a pensar que quizás en un futuro próximo se pueda contribuir a mejorar la fertilidad de los rodeos por medio de una selección activa sobre los factores que mejoran este carácter en el macho. 

En este sentido sería muy importante que los CIA vigilaran este aspecto (fertilidad de los toros) sobre todo debido a la difusión masiva de esos mismos toros en los rodeos comerciales. 

Un mejoramiento pragmático de la fertilidad y la difusión de un toro en IA reposa sobre un estudio «individual» de cada animal en relación al número de espermatozoides inseminados y la fertilidad. ΩC

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Fuente: - Hansen.Virbac, France 

 

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